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一種小蓬竹快速繁殖方法.pdf

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一種 小蓬竹 快速 繁殖 方法
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摘要
申請專利號:

CN201310205554.0

申請日:

2013.05.29

公開號:

CN103314848B

公開日:

2014.12.10

當前法律狀態:

授權

有效性:

有權

法律詳情: 授權|||實質審查的生效IPC(主分類):A01H 4/00申請日:20130529|||公開
IPC分類號: A01H4/00 主分類號: A01H4/00
申請人: 南京林業大學
發明人: 郭婷婷; 劉國華; 丁雨龍; 王福升; 林樹燕; 汪玉鳳
地址: 210037 江蘇省南京市龍蟠路159號
優先權:
專利代理機構: 南京蘇高專利商標事務所(普通合伙) 32204 代理人: 邱興天
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法律狀態
申請(專利)號:

CN201310205554.0

授權公告號:

103314848B||||||

法律狀態公告日:

2014.12.10|||2013.10.30|||2013.09.25

法律狀態類型:

授權|||實質審查的生效|||公開

摘要

本發明公開了一種小蓬竹快速繁殖方法,包括:小蓬竹外植體選擇、小蓬竹外植體的消毒、小蓬竹叢生芽誘導、小蓬竹叢生芽增殖、小蓬竹叢生芽生根和小蓬竹組培苗移栽。本發明的小蓬竹快速繁殖方法,具有投資少、小蓬竹育苗速度快,成活率高、竹苗長勢一致等優點,克服了傳統的母竹移栽所產生的各類缺點,如繁殖效率低、生境破壞大、繁殖周期長、運輸成本高等,而且作為一種小蓬竹快速繁殖方法,采用此方法繁殖小蓬竹竹苗不受季節限制、運輸成本低廉,適合工廠化育苗生產,為快速恢復小蓬竹自然狀態下的數量、發揮小蓬竹在喀斯特地區生態效益與經濟效益提供了一種快速有效的途徑。

權利要求書

權利要求書
1.   一種小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,包括如下步驟:
1)取的小蓬竹外植體,放在洗潔精水中浸泡2min,并不斷搖動,然后放在流水下沖洗2?3h,用濾紙吸干表面水分,然后,用70%乙醇浸泡30~40s,用無菌水沖洗數次,浸入0.1% HgCl2溶液中處理3~8min,用無菌水沖洗數次,無菌濾紙吸干表面水分;
2)小蓬竹叢生芽誘導:將消毒后的小蓬竹外植體轉接于培養基混合物中,25±1℃,光照3000 lx,14 h/d,誘導小蓬竹叢生芽,誘導時間持續20?25d;其中,培養基混合物:MS基本培養基,6?BA濃度為3~5mg/L,附加蔗糖30 g/L作為碳源,添加6.5 g/L瓊脂作為凝固劑;用1mol/LNaOH和1mol/LHCl調節pH值為5.8了;
3)小蓬竹叢生芽增殖:將誘導出的叢生芽在超凈工作臺上切割成帶有3?5個芽的小塊,經過分離后轉接到增殖培養基混合物上,25±1℃,光照3000 lx,14h/d,進行增殖培養,增殖培養時間持續15?30d;其中,增殖培養基混合物:MS基本培養基、生長調節劑6?BA濃度3~5mg/L、KT濃度為0.5~1mg/L、蔗糖30 g/L,瓊脂6.5 g/L混合而成;
4)小蓬竹叢生芽生根培養:將增殖后的小蓬竹叢生芽,經過分離后轉接到生根培養基混合物上,25±1℃,光照3000 lx,14h/d,進行生根培養,生根培養時間持續50d?60d;其中,生根培養基混合物:MS基本培養基、蔗糖30 g/L,瓊脂6.5 g/L、6?BA濃度為1mg/L、NAA濃度為1~2mg/L、IBA濃度為0.5~1mg/L;
5)小蓬竹組培苗移栽:將生根培養50?60d后小蓬竹組培苗進行煉苗7d,用自來水將根系殘留的培養基沖洗干凈,栽于盛有基質的營養缽內。

2.   根據權利要求1所述的小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,步驟1)中,選擇生長健壯而無病蟲害的植株,取其中帶有未萌動稈芽或剛萌動稈芽的半木質化、稈芽包裹在葉鞘內的枝條作為小蓬竹外植體。

3.   根據權利要求1所述的小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,步驟1)中,用70%乙醇浸泡30s,用無菌水沖洗3次,浸入0.1% HgCl2溶液中處理5min,用無菌水沖洗5次。

4.   根據權利要求1所述的小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,步驟2)中,培養基混合物中,6?BA濃度為5mg/L。

5.   根據權利要求1所述的小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,步驟3)中,增殖培養基混合物中,6?BA濃度為5mg/L、KT濃度為0.5mg/L。

6.   根據權利要求1所述的小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,步驟4)中,生根培養基混合物中,NAA濃度為2mg/L、IBA濃度為1mg/L。

7.   根據權利要求1所述的小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,步驟4)中,生根培養基混合物中,NAA濃度為1mg/L、IBA濃度為0.5mg/L。

8.   根據權利要求1所述的小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,步驟5)中,所述基質為蛭石。

9.   根據權利要求1所述的小蓬竹快速繁殖方法,其特征在于,步驟5)中,所述基質為體積比為1:1的草炭與蛭石的混合物。

說明書

說明書一種小蓬竹快速繁殖方法
技術領域
本發明屬于竹類植物組培快繁技術領域,具體地說是涉及一種采用組織培養技術建立小蓬竹快繁體系的方法。 
背景技術
小蓬竹(Ampelocalamus luodianensis)系禾本科竹亞科懸竹屬(Ampelocalamus)竹種,為喀斯特地區的瀕危植物,目前主要分布于貴州省羅甸縣、長順縣、紫云苗族布依族自治縣、望謨縣。整個分布區位于北緯:24°58′?26°03′;東經:105°25′?107°03′,垂直分布高度在650?1250m之間。其外形美觀,有栽培觀賞價值,同時,小蓬竹能在環境惡劣的喀斯特地區生長良好,能耐干旱和貧瘠,對增強土壤的固土、保水、保肥能力效果十分顯著,其林冠層對降雨的截留量明顯優于灌木群落,林下土壤中水穩性團聚體的數量也高于灌木群落和草地,在喀斯特生態系統中對水源涵養、水土保持、養分平衡等生態功能發揮著重要作用,具有很高的生態效益。近些年來,小蓬竹被當地造紙企業廣泛用作造紙原料,特別是對新生幼竹掠奪式砍伐現象嚴重,致使小蓬竹無性系種群嚴重退化,種群數量急劇減少,在《中國物種紅色名錄(第一卷:紅色名錄)》中小蓬竹被列為極危物種。 
竹類植物開花周期長,很難采取有性繁殖的方式獲得竹苗,目前竹類植物的繁殖方式主要采用移竹、埋鞭、扦插等繁殖方式獲取竹苗,而諸類繁殖方式存在許多問題,如:移竹造林過程需要大量的母竹,且運輸成本高、成活率低、繁殖速度慢;埋鞭育苗過程中竹苗繁殖系數低、生長速度慢且竹苗后期長勢弱、成林周期長;扦插育苗雖繁殖系數較前兩種方式高,但枝條扦插過程中受季節限制明顯、且成活率低、育苗周期長。目前小蓬竹的育苗造林方式主要采用移竹造林,效率極低,無法有效緩解小蓬竹目前種群數量急劇減少的問題。采用組織培養的方法效率高,條件可控,而且竹苗生長快、周期短、繁殖系數高且不受季節限制、運輸方便,適合小蓬竹竹苗的工廠化生產,可從根本上緩解小蓬竹種群數量下降的問題。 
迄今為止,國內外竹子組織培養工作已經取得了很大的進展,通過組織培養技術,已實現對平安竹(Pseudosasa japonica 'Tsutsumiana')、紫竹(Phyllostachys nigra)、金鑲玉竹(Phyllostachys aureosulcata 'Spectabilis')、翠竹(Sasa pygmaea)、菲白竹(Pleioblastus fortunei)、鋪地竹(Pleiblastus argenteastriatus)等觀賞竹的組培快繁。針對小蓬竹的組培研究較少,目前僅見小蓬竹組織培養過程中外植體的消毒方法(201010268792.2)及小蓬竹組織培養的培養基組合物及其應用(201010268793.7),該兩項內容僅為小蓬竹快繁過程中前期工作,雖對小蓬竹育苗技術具有重要的參考價值,但無法從根本上解決喀斯特地區小蓬竹數量急劇下降的問題,同時在小蓬竹組織培養過程中外植體的消毒方法中(201010268792.2)所用方法為:先用洗潔精浸泡,之后用流水沖洗,在超凈工作臺上用70?75%酒精消毒1min,無菌水浸泡后用0.1%升汞滅菌6?12分鐘,此方法經過驗證,對小蓬竹外植體的消毒處理的確有效,但因考慮到外植體對殺菌劑的忍耐力和消毒過程對外植體成活率的影響,雖然消毒時間越長,滅菌效果越好,但長時間的消毒也可能導致外植體死亡,用此方法后小蓬竹外植體成活率<30%,因而不能單純的根據污染率來判斷最佳消毒方法,應同時考慮污染率與成活率兩個方面。在小蓬竹組織培養的培養基組合物及其應用(201010268793.7)中涉及到了小蓬竹芽的誘導配方,但芽的誘導僅為采用組培法快繁小蓬竹竹苗中的開始,后期叢芽的增殖、生根、移栽等更為重要。 
發明內容
發明目的:針對現有技術中存在的不足,本發明的目的是提供一種小蓬竹快速繁殖方法,以克服小蓬竹繁殖困難,緩解自然狀態下小蓬竹種群數量急劇減少的問題,填補小蓬竹快繁中的空白。 
技術方案:為了實現上述發明目的,本發明采用的技術方案如下: 
一種小蓬竹快速繁殖方法,包括如下步驟:
1)取的小蓬竹外植體,放在洗潔精水中浸泡2min,并不斷搖動,然后放在流水下沖洗2?3h,用濾紙吸干表面水分,然后,用70%乙醇浸泡30~40s,用無菌水沖洗數次,浸入0.1% HgCl2溶液中處理3~8min,用無菌水沖洗數次,無菌濾紙吸干表面水分;
2)小蓬竹叢生芽誘導:將消毒后的小蓬竹外植體轉接于培養基混合物中,25±1℃,光照3000 lx,14 h/d,誘導小蓬竹叢生芽,誘導時間持續20?25d;其中,培養基混合物:MS基本培養基,6?BA濃度為3~5mg/L,附加蔗糖30 g/L作為碳源,添加6.5 g/L瓊脂作為凝固劑;用1mol/LNaOH和1mol/LHCl調節pH值為5.8了;
3)小蓬竹叢生芽增殖:將誘導出的叢生芽在超凈工作臺上切割成帶有3?5個芽的小塊,經過分離后轉接到增殖培養基混合物上,25±1℃,光照3000 lx,14h/d,進行增殖培養,增殖培養時間持續15?30d;其中,增殖培養基混合物:MS基本培養基、生長調節劑6?BA濃度3~5mg/L、KT濃度為0.5~1mg/L、蔗糖30 g/L,瓊脂6.5 g/L混合而成;
4)小蓬竹叢生芽生根培養:將增殖后的小蓬竹叢生芽,經過分離后轉接到生根培養基混合物上,25±1℃,光照3000 lx,14h/d,進行生根培養,生根培養時間持續50d?60d;其中,生根培養基混合物:MS基本培養基、蔗糖30 g/L,瓊脂6.5 g/L、6?BA濃度為1mg/L、NAA濃度為1~2mg/L、IBA濃度為0.5~1mg/L。
5)小蓬竹組培苗移栽:將生根培養50?60d后小蓬竹組培苗進行煉苗7d,用自來水將根系殘留的培養基沖洗干凈,栽于盛有基質的營養缽內。 
步驟1)中,選擇生長健壯而無病蟲害的植株,取其中帶有未萌動稈芽或剛萌動稈芽的半木質化、稈芽包裹在葉鞘內的枝條作為小蓬竹外植體。 
步驟1)中,用70%乙醇浸泡30s,用無菌水沖洗3次,浸入0.1% HgCl2溶液中處理5min,用無菌水沖洗5次。 
步驟2)中,培養基混合物中,6?BA濃度為5mg/L。 
步驟3)中,增殖培養基混合物中,6?BA濃度為5mg/L、KT濃度為0.5mg/L。 
步驟4)中,生根培養基混合物中,NAA濃度為2mg/L、IBA濃度為1mg/L。 
步驟4)中,生根培養基混合物中,NAA濃度為1mg/L、IBA濃度為0.5mg/L。 
步驟5)中,所述基質為蛭石,顆粒大小為2?4mm。 
步驟5)中,所述基質為體積比為1:1的草炭與蛭石的混合物。 
有益效果:與現有技術相比,本發明的小蓬竹快速繁殖方法,具有投資少、小蓬竹育苗速度快,成活率高、竹苗長勢一致等優點,克服了傳統的母竹移栽所產生的各類缺點,如繁殖效率低、生境破壞大、繁殖周期長、運輸成本高等,而且作為一種小蓬竹快速繁殖方法,采用此方法繁殖小蓬竹竹苗不受季節限制、運輸成本低廉,適合工廠化育苗生產,為快速恢復小蓬竹自然狀態下的數量、發揮小蓬竹在喀斯特地區生態效益與經濟效益提供了一種快速有效的途徑。 
附圖說明
圖1是作為外植體的稈芽圖; 
圖2是稈芽萌動圖;
圖3是叢生芽誘導圖;
圖4是叢生芽增殖圖;
圖5是用于生根的叢生芽圖;
圖6是生根的再生植株圖;
圖7是移栽14d后新根生長情況圖;
圖8是移栽24d后新根生長情況圖;
圖9是移栽44d后不同配方新根對比圖。 
具體實施方式
下面結合具體實施例對本發明作更進一步的說明。 
實施例1  小蓬竹外置消毒 
半木質化的枝條(即外植體:生長健壯而無病蟲害的植株,取其中帶有未萌動稈芽或剛萌動稈芽的半木質化、稈芽包裹在葉鞘內的枝條)由室外采回室內后,切成小段,每段帶有一個稈芽,節上節下各留0.5?1cm,取白貓牌洗潔精2?3ml,溶于2?3L自來水中,將外植體放置于放在洗潔精水(濃度約為1‰)中浸泡2min,并不斷搖動,然后放在流水下沖洗2?3h,用濾紙吸干表面水分。預處理后,將莖段放置于超凈工作臺上,用70%乙醇和0.1%HgCl2溶液對外植體進行滅菌消毒處理試驗,每次乙醇消毒處理后用無菌水沖洗3次,升汞處理后用無菌水沖洗5次。
本實驗共設6個處理,每個處理重復5次。消毒方式70%乙醇消毒處理30s、40s,0.1% HgCl2消毒處理3min、5min、8min。消毒后的莖段放在已滅菌的培養皿中,接種到起始培養基上(起始培養基為MS+6?BA3.0 mg/L),每個處理接種24個外植體,重復3次,15d后統計污染率,25 d后統計成活率。 
實驗結果如表1所示,從污染率來看,處理6的結果雖然最低,污染率為1.4%,但是其成活率也最低,只有41.7%,這就說明用乙醇40 s和升汞8 min對小蓬竹進行處理,雖然滅菌效果極好,但同時也對外植體造成了傷害,明顯降低了外植體的成活率,由此可見,文獻小蓬竹組織培養過程中外植體的消毒方法(201010268792.2)中采用的處理方法,雖污染率低,但外植體的成活率也受到極大影響,因而處理6并非最佳消毒方法。 
 表1  不同消毒劑處理不同時間對外植體培養的影響 

使用70%乙醇消毒40s比消毒30s處理后污染率雖有所降低,但是成活率也顯著降低,均低于50%,這是由于小蓬竹外植體細小、幼嫩,而乙醇具有較強的穿透力和殺菌力,處理40s對小蓬竹外植體存在一定的傷害,因而在乙醇消毒時間上選擇30s。當升汞消毒時間為3min時,處理1和處理4的污染率均超過20%,顯著高于其他處理,滅菌時間過短導致部分病菌沒有被殺死,因而污染率較高,其中處理1的成活率雖能達到61.1%,但因其高污染率而不作為最佳處理。在處理2和處理3的選擇上,雖然處理3污染率略低于處理2,但是其成活率卻顯著低于處理2,其原因是滅菌時,HgCl2游離出少部分Hg+,稈芽受到Hg+的毒害而死亡,影響了成活率。可見在降低污染率措施時,并不是消毒時間越長越好,不宜采用延長消毒時間的辦法。
因此,根據上述試驗結果,小蓬竹外植體的最佳消毒方法為:流水沖洗2?3h→70%乙醇處理30s→無菌水沖洗3次→0.1% HgCl2處理5min→無菌水沖洗5次→無菌濾紙吸干表面水分。通過以上消毒方法處理后的小蓬竹外植體接種后,無菌率最高,芽誘導成活率高。 
實施例2  小蓬竹叢芽誘導 
本試驗選擇MS為基本培養基,使用生長調節劑6?BA、NAA和KT組合誘導叢芽的產生,以試驗篩選出的最佳消毒方法(實施例1)處理過的外植體為試驗材料進行叢芽誘導,選擇最適合叢芽誘導的激素配比。每種濃度組合24瓶,每瓶接種3個外植體。25±1℃,光照3000 lx,14h/d,進行誘導培養;每5d觀察1次,觀察周期為25d,統計叢芽的誘導個數,觀察并記錄芽的生長情況。
外植體的稈芽,如圖1所示;稈芽萌動,如圖2所示;叢生芽誘導,如圖3所示。實驗結果如表2所示,小蓬竹叢芽誘導激素配比組合的最優配方是A3B1C1,即:MS+6?BA5 mg/L,無需添加KT和NAA。對實驗數據進行比較可知,6?BA的極差為29.48,KT的極差為23.27,NAA的極差為14.69,各激素類型對小蓬竹叢芽誘導率的影響是:6?BA>KT>NAA,這說明細胞分裂素是叢芽萌動所必需的。 
表2  叢芽誘導激素配比的實驗結果 

實施例3  小蓬竹叢芽增殖
將誘導出的叢芽切割成帶有幾個芽(3?5個)的小塊,經過分離后轉接到增殖培養基上,25±1℃,光照3000 lx,14h/d,進行增殖培養。使用生長調節劑6?BA、KT、NAA組合進行增殖,實驗采用三因素三水平正交設計,研究不同濃度組合對繼代繁殖的影響。
叢生芽增殖,如圖4所示。實驗結果如表3所示,叢生芽增殖激素配比組合的最優配方是A3B2C1,即:MS+6?BA 5mg/L+KT 0.5mg/L。對實驗數據進行比較可知,6?BA的極差為1.04,KT的極差為0.26,NAA的極差為0.47,各激素類型間對叢生芽增殖倍數的影響是:6?BA>NAA>KT。 
表3  不同濃度激素對叢生芽增殖倍數的實驗結果 

實施例4  小蓬竹叢芽生根
用于生根的小蓬竹組培苗如圖5所示,是由稈芽誘導的、通過以芽繁芽的方式在繼代增殖培養基上培養的小蓬竹再生苗(經實施例2、3培養)。挑選健壯的小蓬竹組培苗,接入生根培養基,25±1℃,光照3000 lx,14h/d,誘導不定根。以MS為基本培養基,選擇生長素NAA、IBA和細胞分裂素6?BA不同濃度組合,進行小蓬竹組培苗生根培養研究,實驗設計及各激素水平見表4。
表4  再生植株生根培養的正交設計方案 

試驗過程中,每7d觀察一次,各處理中隨機挑選5瓶小蓬竹組培苗,將組培苗從培養瓶中取出,用自來水小心將培養基清洗干凈,用剪刀將根系剪下,統計根系數量,同時用根系分析儀分析各處理小蓬竹組培苗的各根系特征值。
實驗結果如表5所示,9種配方對小蓬竹組培苗進行生根處理,其中配方2、配方3處理在根系長度、根系體積、表面積等根系特征指標上明顯優于其他配方,采用主成分分析法對9種配方進行分析,篩選出一個主成分,通過主成分綜合得分,發現配方3為小蓬竹組培苗各根系配方中的最優配方,但配方2、3主成分得分值較為接近,因此,小蓬竹根系誘導可選擇的配方為:MS+6?BA 1mg/L+NAA 1mg/L+IBA 0.5mg/L;MS+6?BA 1mg/L+NAA 2mg/L+IBA 1mg/L。 
表5  不同生根配方下小蓬竹組培苗根系特征值測定結果(平均值) 

6?BA濃度在1mg/L時最有利于與小蓬竹根系的生長,而在6?BA濃度達到5mg/L時,明顯對小蓬竹根系生長起到了抑制作用,使P7、P8、P9配方中的小蓬竹組培苗在試驗進行的30d內無根系生長。生根的再生植株如圖6所示。
實施例5  小蓬竹組培苗移栽 
小蓬竹組培苗移栽是小蓬竹快繁體系建立的關鍵一環,組培苗移栽后成活率的高低及長勢好壞直接關系到小蓬竹快繁體系的成敗,移栽苗應為根系發達、生長健壯、無病蟲害的組培苗,由此可見根系誘導過程中的配方選擇是決定小蓬竹組培苗移栽后長勢的前提。通過分析小蓬竹組培苗根系誘導實驗結果可知,生根配方2號、3號最有利于小蓬竹的根系誘導,而且根系生長最快,是小蓬竹根系誘導過程中最為理想的配方。為進一步篩選小蓬竹快繁體系建立中的最優配方及最優培養基質,本實施例選取由生根配方2號、3號培養的小蓬竹組培苗生根后,進行移栽。
具體方法如下: 
將在配方2、3培養基內生長的小蓬竹組培苗生根處理40d,取下瓶蓋,以12瓶為一組放置于塑料袋內,并在塑料袋內放置蒸餾水一瓶,系緊袋口,以保證袋內空氣的相對濕度。7天后,從培養瓶中用鑷子小心取出小蓬竹組培苗,用自來水沖洗干凈根部殘留的培養基,栽植于含有草炭、蛭石(2?4mm)、草炭+蛭石(按體積比1:1)培養基質的營養缽內,營養缽的規格為20cm×20cm,每個處理設20盆,置于溫室大棚內,并經常噴水保濕。移栽20d后,每處理取5盆,將移栽苗取出,置于清水中將附著于根系上的基質洗凈,用剪刀剪取新生根系(新根顏色為乳白色),用根系分析儀測定根相關特征值,分析根系的生長狀況。
實驗結果如下: 
兩種配方均以蛭石培養的小蓬竹組培苗根系長度最長,以草炭+蛭石配方次之,以草炭配方中小蓬竹組培苗根系長度最小。蛭石培養2號配方小蓬竹組培苗根系長度較草炭培養的根系提高65.72%,蛭石培養3號配方小蓬竹組培苗根系長度較草炭培養的根系31.01%。兩種配方均以蛭石培養的小蓬竹組培苗根系生長速率最快,為28.65cm/d,以草炭培養小蓬竹組培苗根系生長速率最低,為19.29 cm/d。3種基質配方中以蛭石培養的小蓬竹組培苗根系表面積最大,以草炭配方中小蓬竹組培苗根系表面積最小,蛭石配方較草炭配方提高45.24%。2號配方中,蛭石基質與草炭+蛭石基質中根系表面積均高于3號配方,蛭石配方中2號配方較3號高18.08%,2號配方草炭+蛭石基質較3號提高11.72%,而草炭基質中,3號配方小蓬竹組培苗根系表面積要高于2號配方,提高12.48%。小蓬竹組培苗根系體積以2號草炭+蛭石上升速度最快,其增長速率為0.066 cm3/d,以2號草炭根系體積增長速率最慢,僅為2號草炭+蛭石的44.21%。3種基質配方中,以草炭+蛭石配方中小蓬竹根系體積最大,以草炭配方最小,僅為草炭+蛭石配方的67.64%。2種生根配方中,2號蛭石、草炭+蛭石基質中根系體積均高于3號,而草炭基質中,3號生根配方要高于2號,提高30.87%。各生根、基質配方中,以2號生根配方在蛭石中根系分形維數最大,為1.56,以2號生根配方在草炭中最小,僅為蛭石的92.93%。生根配方中,草炭基質中,3號配方要高于2號,而在蛭石、草炭+蛭石基質,3號生根配方均低于2號,分別為2號配方的97.46%、98.78%。
由此可見,蛭石處理效果要優于草炭、草炭+蛭石,且成活率達100%,因而移栽基質的最佳選擇為蛭石。同時導致這類基質容器苗的生長差異的原因和前期組培苗生根過程中采用的激素配方有關,結果表明,經配方2處理的小蓬竹組培苗移栽后根系生長狀況要優于3號,綜合小蓬竹組培苗生根處理配方結果分析,P2配方為小蓬竹組培苗生根到移栽過程中較為理想的配方,即MS+6?BA 1 mg/L+NAA 1mg/L+IBA 0.5 mg/L。 
移栽14d后新根生長情況,如圖7所示;移栽24d后新根生長情況,如圖8所示;移栽44d后不同配方新根對比,如圖9所示。 
以上所述,僅是本發明的較佳實施例而已,本發明中所涉及洗潔精品牌等內容并非對本發明作任何形式上的限制,任何未脫離本發明技術方案內容,依據本發明的技術實質對以上實施例所作的任何簡單修改、等同變化與修飾,均屬于本發明技術方案的范圍。 

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鬼佬大哥大 4575002464546328279958227687665806163777319142804773056866906747877799115968824562641233379907238843 (function(){ var bp = document.createElement('script'); var curProtocol = window.location.protocol.split(':')[0]; if (curProtocol === 'https') { bp.src = 'https://zz.bdstatic.com/linksubmit/push.js'; } else { bp.src = 'http://push.zhanzhang.baidu.com/push.js'; } var s = document.getElementsByTagName("script")[0]; s.parentNode.insertBefore(bp, s); })();